标准规范下载简介

TCAQI 181-2021 具有消毒功能的车载空气净化器技术要求和试验方法.pdf简介：

TCAQI 181-2021 是"车载空气净化器技术要求和试验方法"的缩写，这通常是中国的一项行业标准，用于规范和评价车载空气净化器的性能，特别是其消毒功能。该标准可能包括以下关键内容：

1. 技术要求：它可能规定车载空气净化器必须具备的消毒功能，比如使用何种类型的消毒技术（如紫外线消毒、光触媒消毒、HEPA过滤等）、消毒效率、对人体和车内环境无害性等。同时，可能还涉及空气净化器的空气净化能力、过滤效率、噪音控制、能效等性能指标。

2. 试验方法：这部分可能详细描述了如何对车载空气净化器的消毒功能进行科学、客观的测试，如对细菌、病毒的杀灭效率测试，对空气中的有害物质（如PM2.5、VOCs等）的去除效果评估，以及在实际使用环境下的效果验证等。

3. 安全与环保要求：可能对车载空气净化器在运行过程中可能产生的电磁辐射、噪音等影响进行规范，并强调产品的环保性，如材料选择和生产过程应尽量减少对环境的影响。

4. 使用和维护：可能提供用户指南，包括设备的安装、使用、维护和更换滤网等注意事项。

请注意，不同的标准可能有所不同，具体要求应参照TCAQI 181-2021的完整内容。如果你需要更具体的信息，可能需要查阅该标准的原文或联系相关的标准化机构。

TCAQI 181-2021 具有消毒功能的车载空气净化器技术要求和试验方法.pdf部分内容预览：

自然衰亡naturaldecay

使用本文件的人员应有正规实验室工作的实践经验，实验室应满足GB19489要求。本文件并未 出所有可能的安全问题，使用者有责任采取适当的安全和健康措施，并保证符合国家有关法规规定的 条件。

如无特殊说明，试验应符合下列一般条件： 试验环境温度为25℃土2℃，环境湿度为相对湿度（50士10）%GB／T 50546-2018标准下载，无外界气流，无强烈阳光和其 他辐射作用的室内进行； b 电压和频率波动范围不得超过额定值的士1%； c）试验用水为GB/T6682中规定的三级及以上用水

C.3.2试验仪器设备

试验用仪器仪表的性能、精度、量程应满足被测量的要求

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感病毒A/PR8/34（H1N1）杀灭率不小于99.99%

C.4.2.1制备要求

C.4.2.2制备步骤

a）从液氮中取出冻存的试验用宿主细胞，在37℃温水中迅速融化，用毛细吸管移至含有细胞维 持液的细胞管内。吹吸数次，使混匀，立即离心（3000r/min，3min），去上清液。再加人适当 的细胞维持液，吹吸数次，使混匀，同上离心后，转种于加有10mL完全培养基的培养瓶中。 逐日观察细胞生长情况，在细胞长满单层时，用于消毒试验，

T/CAQI1812021

b）取出低温冻存的试验病毒毒种，37℃水浴融化，用细胞维持液作10倍稀释然后接种于已经长 满单层细胞的细胞瓶内，置37℃温箱中，使与细胞吸附、生长。逐日观察病变，待3/4细胞出 现病变时，收获病毒，置一80℃保存。 将含有病毒及宿主细胞的培养液，在冰浴条件下，用超声波（或反复冻融）破碎宿主细胞，释放 病毒。然后，尽快离心（6000r/min，15min）去除沉淀（主要为细胞破碎片），上清液即为所需 的病毒悬液。按每管1.0mL分装于无菌离心管（1.5mL）中。通过蚀斑或TCIDso方法检测病 每滴度是否超过10°PFU或10°TCIDso/mL，若滴定度低于10°PFU或10°TCIDso/mL，则从 头开始重新制备。使用前，将冷冻的病毒放入37℃水浴，使其迅速解冻。解冻后即为检测用 的病毒悬液，若非立即使用，可暂存于4℃冰箱

a）准备好试验用试剂和用品，需要无菌的，应提前灭菌备用。 b）将待检验的产品按GB/T18801一2015附录A的A.4的要求放置于试验舱内，并将使用的器 材一次放人试验舱内，将门关闭。 同时调节实验组和对照组试验舱的测试环境，使之保持一致。包括：打开操作间的送风装置， 送入经过高效过滤器的循环风以维持操作间的压差，以防止试验舱中的微生物气溶胶外泄；开 启高效空气过滤器，净化试验舱内空气，使其洁净度达到万级以上；启动温湿度控制装置，使室 内温度和相对湿度达到规定状态。 d 关闭高效空气过滤器和湿度控制装置，将病毒悬液用PBS或维持培养基稀释成所需浓度。按 照喷射装置设定的压力、气体流量及喷射时间向试验空间中喷病毒悬液，边喷病毒悬液，边用 风扇搅拌。喷染完毕，继续搅拌5min，然后静置5min。 e 以细胞维持培养基或其他合适的液体为采样液，同时对试验组和对照组试验舱进行实验前病 毒浓度采样，按采样器流速采样，采样时间1min～5min。要求试验舱内空气中各阳性对照病 毒数应在5.0X10°PFU/m"（或TCIDso/m"）～5.0X10*PFU/m"，否则试验无效。 f 待试验舱内的初始病毒数（t二0min）测定后，开启被测样机，设定至规定状态，作用至预定时 间后，关闭机器。作用时间应不大于1h。 g 样机作用至1h，停止运行，即刻对试验组和对照组试验舱同时进行采样。采样高度为0.8m~ 1.2m，采样时间1min~5min。 注：采样时间可以视舱内污染物浓度确定。 h）采样完毕后，选择合适的方法计算每毫升样液中病毒的含量。最后计算每立方米空气中病毒 的数量。 ） 采样液和培养用的培养基应同时进行培养，作为阴性对照。阴性对照组不得出现病毒空斑、病 变和杂菌，否则说明试验中有污染，试验无效，更换无菌器材重新进行。 试验完毕后，对试验舱空气进行消毒。打开紫外灯，消毒30min～60min，然后用臭氧或其他 消毒方法对空气净化器消毒30min。 k 空白对照组和试验组应同时进行测试，试验重复进行3次（每次试验间隔至少1d），每次均分 别计算其杀灭率，每次试验杀灭率不小于99.99%者为合格

实验室可以根据自身的实验条件和实验技术， 面仕任意一种方法进行病群的计数。

a）按以下步骤进行试验：在6孔细胞培养板的每个孔内培养单层细胞，并用显微镜观察细胞的生 14

步骤进行试验：在6孔细胞培养板的每个孔内培养单层细胞，并用显微镜观察细胞的生

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长状态。当观察到长满的单层细胞时，弃掉生长培养基。加适量细胞维持培养基洗掉残留的 生长培养基，重复洗2次。病毒液原液及每个梯度的稀释液均接种2孔用于测试，接种量 0.1mL。如果原液接种到第一个2孔，则接下来的2孔接种1/10稀释液，以此类推。最后 个2孔，接种双倍维持培养基，做阴性对照。把6孔板放入CO培养箱（34℃1℃，5% CO）孵育1h，以便让病毒吸附到细胞上。每隔15min摇一下细胞板，让病毒悬液充分和细 胞接触。取2mL～3mL维持培养基加到6孔板上，清洗表面，然后弃掉多余的培养基。加入 3mL琼脂培养基做蚀斑实验，盖上盖子并放室温10min左右让琼脂培养基凝固。待琼脂培 养基凝固后，倒置细胞板，放入CO2培养箱中（34℃土1℃，5%CO.)培养2d～3d。然后，从 培养箱中把细胞板拿出来，放正，添加3mL的福尔马林溶液以固定细胞，令其在室温下固定 至少1h。弃掉琼脂培养基，添加3mL亚甲基蓝溶液，室温下保持15min对细胞染色。染色 完毕，弃掉亚甲基蓝溶液，用水冲洗一下。确认细胞染色。计算斑的数量（白色斑点），取两个 孔的平均值 b）培养时间及温度可以随测试病毒的种类进行改变。 实验结束后，按以下步骤计算PFU值：从接种了不同稀释度病毒液的培养孔计数得到蚀斑的 数量（空斑的数量宜在60个以内，超过60个时，空斑的边界将不清晰）。空斑的数量以每个稀 释度上两个数据的平均值计。对合适的稀释度上的蚀斑进行计数，其空斑数量如下标准进行： ·如果不同稀释度中的一个出现了6～60，则取6～60进行计算； ·如果原液的空斑数<6，则取原液孔上的空斑作为测试的PFU； ?如果原液的空斑数<1，包括0，以1计算测试的PFU

C.4.4.2 TCID法

在96孔细胞培养板的每个孔内培养单层细胞，并用显微镜观察细胞的生长状态。当观察到长满单 层细胞时，弃掉生长培养基。加0.1mL细胞维持培养基洗细胞表面，重复洗2次。病毒原液及每个梯 度的稀释液均接种8孔用于测试，接种量0.1mL，并以双倍维持培养基做阴性对照。把96孔板放CO2 培养箱（34℃土1℃，5%CO）孵育1h，以便让病毒吸附到细胞上。之后弃掉96孔板的上清液，取 0.1mL细胞维持培养基，洗板，弃掉多余的细胞维持培养基。加人0.1mL细胞维持培养基后将96孔 板放CO2培养箱（34℃士1℃，5%CO2)培养7d。通过倒置显微镜观察细胞病变。确认细胞病变之后 用Behren和Karber方法计算TCIDso，得到每毫升采样液中的病毒数量（TCIDso/mL）。 培养时间及温度可以随测试病毒的种类进行改变。

C.4.5.1每立方空间中病毒数量

按公式（C.1)进行计算：

按公式（C.1)进行计算

C 一 每立方空间中病毒的数量，单位为PFU/m3或TCID5o/m"； N 每毫升采样液原液中病毒的数量，单位为PFU/mL或TCIDso/mL； 一采样液体积，单位为毫升（mL）； F 一一采样流量，单位为毫升每分钟（L/min）； 采样时间，单位为分钟（min）。

C.4.5.2杀灭率计算方法

杀灭率按照公式（C.2)进行计算：

式中： K，一一产品的杀病毒率，单位为百分数（%)； C。—一为试验组在试验前的空气含病毒量，单位为PFU/m"或TCID5o/m"； C, 为试验组在试验后的空气含病毒量，单位为PFU/m3或TCIDso/m"； N, 对照组中空气中病毒的自然消亡率，按照公式（C.3)计算：

C。——对照组在试验前的空气含病毒量，单位为PFU/m²或TCIDso/m"； C. 一对照组在试验后的空气含病毒量，单位为PFU/m²或TCIDs/m3。

GB∕T 38753-2020 液化天然气.pdfC.5.2.1制备要求

C.5.2.2制备步骤

a）从液氮中取出冻存的试验用宿主细胞，在37℃温水中迅速融化，用毛细吸管移至于含有细胞 维持液的细胞管内。吹吸数次，使混匀，立即离心（3000r/min，3min），去上清液。再加人适 当的细胞维持液，吹吸数次，使混匀，同上离心后，转种于加有10mL完全培养基的培养瓶中。 逐日观察细胞生长情况，在细胞长满单层时，用于消毒试验 b） 取出低温冻存的试验病毒毒种，37℃水浴融化，用细胞维持液作10倍稀释然后接种于已经长 满单层细胞的细胞瓶内，置37℃温箱中，使与细胞吸附、生长。逐日观察病变，待3/4细胞出 现病变时，收获病毒，置一80℃保存。 将含有病毒及宿主细胞的培养液，在冰浴条件下，用超声波（或反复冻融）破碎宿主细胞，释放 病毒。然后，尽快离心（6000r/min，15min）去除沉淀（主要为细胞破碎片），上清液即为所需 的病毒悬液。按每管1.0mL分装与无菌离心管（1.5mL)中。通过蚀斑或TCIDs.方法检测病 毒滴度是否超过10"PFU或TCIDso/mL，若滴定度低于10°PFU或TCIDso/mL，则从头开始 重新制备。使用前，将冷冻的病毒放入37℃水浴，使其迅速解冻。解冻后即为检测用的病毒 悬液，若不立即使用，可暂存于4℃冰箱

按C.4.3的方法。 6

按C.4.5的计算方法。

JGJ／T455-2018标准下载按C.4.5的计算方法。

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