BJS202211标准规范下载简介

BJS202211植物源性食品中奥克巴胺的测定.pdf简介：

奥克巴胺（Ochratoxin A，简称OTA）是一种由青霉属和镰刀菌属真菌产生的次生代谢产物，常见于植物源性食品中，如谷物、葡萄酒、咖啡、巧克力等。它是一种强烈的肝脏和肾脏毒性物质，长期摄入可能导致肾损害、免疫系统抑制、甚至癌症风险。

BJS202211可能是指某份关于2022年11月关于植物源性食品中奥克巴胺检测的研究或者报告。在这种情况下，植物源性食品中奥克巴胺的测定通常包括以下步骤：

1. 样品收集：从市场或生产地获取可能含有奥克巴胺的植物源性食品样品，如谷物、豆类、水果等。

2. 样品处理：对样品进行预处理，包括称重、研磨、提取等步骤，以便有效地将奥克巴胺从中分离出来。

3. 检测方法：常用的检测方法包括液相色谱法（HPLC）、气相色谱法（GC）、高效液相色谱-质谱联用（LC-MS）等，这些方法具有高灵敏度和准确度。

4. 标准曲线：制备奥克巴胺的标准曲线，以确定样品中奥克巴胺的浓度。

5. 数据分析：对测定结果进行分析，判断是否达到食品安全标准的限量要求。

6. 结果报告：将检测结果整理成报告，包括样品来源、检测方法、检测结果和可能的风险评估。

这项研究或报告的目的是为了监控植物源性食品的安全性，确保消费者摄入的食物中奥克巴胺含量在可接受的范围内。

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植物源性食品中奥克巴胺的测定

除非另有说明2020年第一季度信息价(总第三十一期)（国家电网2020年3月），本方法所用试剂均为分析纯，水为GB/T6682规定的一级力

3.1.1 甲醇(CH,O)。 3.1.2 盐酸（HCI）：质量分数36%～38%。 3.1.3 乙腈(C2H3N)。 3.1.4 氨水（NH3·H2O）：质量分数25%～28%。 3.1.5 甲醇（CH4O）：色谱纯。 3.1.6 乙腈（C,HN)：色谱纯。 3.1.7 甲酸(CH,O2）:色谱纯

3.1.1 甲醇(CHO)。 3.1.2 盐酸（HCI）：质量分数36%～38%。 3.1.3 乙(C2H3N)。 3.1.4 氨水（NH3·H2O）：质量分数25%～28%。 3.1.5 甲醇（CH4O）：色谱纯。 3.1.6 乙腈(C,H3N)：色谱纯。 3.1.7 甲酸(CH,O2）:色谱纯

3.2.190%甲醇溶液：量取甲醇（3.1.1）900mL，加入100mL水，混匀备用。 3.2.2 50%乙睛溶液：量取乙睛（3.1.6）500mL，加人500mL水，混匀备用。 3.2.3 1%甲酸50%乙腈溶液：量取10mL甲酸（3.1.7），量取乙睛（3.1.3）500mL溶于水并稀释至 1000mL 3.2.45%氨化甲醇溶液：量取5mL氨水（3.1.4），溶于甲醇（3.1.5)并稀释至100mL。 3.2.5 0.1mol/L盐酸溶液：量取8.3mL盐酸（3.1.2），溶于水并稀释至1000mL 3.2.6 0.1%甲酸溶液：量取1mL甲酸（3.1.7），溶于水并稀释至1000mL

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3.4.1标准储备液的配制（0.1mgmL）

准确称取6.20mg盐酸奥克巴胺标准品，用甲醇（3.1.5）溶解，转移到50mL 3.1.5）定容至刻度，配成质量浓度为0.1mg/mL（以奥克巴胺计）标准储备液， 个月。

3.4.2同位素内标储备液的配制（0.1

3.4.3标准中间液的配制（10μg/mL）

吸取1.0mL标准储备液（3.4.1）置于10mL棕色容量瓶中，用甲醇（3.1.5）定容至刻度，配成质量浓 度为10 μg/mL的标准中间液,该溶液在一18℃以下保存，保存期1个月

吸取1.0mL内标储备液（3.4.2）置于10mL棕色容量瓶中，用甲醇（3.1.5）定容至刻度，配成质量浓 度为10μg/mL的内标中间液，该溶液在一18℃以下保存，保存期1个月

3.4.5系列标准工作液

分别吸取5μL、10μL、20μL、50μL、100μL、200μL、400μL标准中间液（3.4.3），以及50μL内标 中间液（3.4.4），于一组10mL容量瓶中，用50%乙睛溶液（3.2.2）定容，混匀，配制成5.00ng/mL、 10.0ng/mL、20.0ng/mL、50.0ng/mL、100ng/mL、200ng/mL、400ng/mL，且内标质量浓度均为 50.0ng/mL的系列标准工作液，现用现配

3.5.1混合型阳离子交换固相萃取柱（6mL，150mg），或性能相当者。 3.5.2行 微孔滤膜：0.22μm，有机相。 3.5.3离心管：PS聚乙烯，50mL。

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取样品的可食部分500g，经高速组织捣碎机均匀捣碎，将其搅拌均匀，均分成两份，加封后标明标 ，制备好的试样一18℃以下避光保存

5. 1.2果汁类样品

将取得的全部原始样品倒入清洁的容器内，充分搅拌混匀，再将混匀样品分装出两份，加封后标明 标记，制备好的试样一18℃以下避光保存

准确称取2g试样（精确至0.01g）置于50mL塑料离心管中，加入10μL的10μg/mL内标中间液 （3.4.4），加入5mL1%甲酸50%乙睛溶液（3.2.3），涡漩混匀1min，超声提取20min。于4℃条件下 9000r/min离心5min，转移全部上清液于15mL离心管中，残渣用5mL1%甲酸50%乙睛溶液 （3.2.3）重复提取一次，合并上清液，待净化

混合型阳离子交换固相萃取柱，使用前依次用5mL甲醇（3.1.1）、5mL水、5mL0.1mol/L盐酸溶 液（3.2.5）活化，将5.2.1的全部上清液，以不大于1mL/min的速度通过固相萃取柱，依次用5mL 0.1mol/L盐酸溶液（3.2.5）、5mL水、5mL90%甲醇溶液（3.2.1）淋洗柱子，弃去淋洗液，真空抽十 2min。用5mL5%氨化甲醇溶液（3.2.4)进行洗脱，收集全部洗脱液，将样液于40℃氮吹至近干，加人 2mL50%乙睛溶液（3.2.2），样液过0.22μm的微孔滤膜（3.5.2），滤液待测定

5.3.1液相色谱参考条件

相色谱参考条件如下： 色谱柱：五氟苯基色谱柱，1.8um，75mm×2.1mm（i.d.），或性能相当者； 流动相：A相为0.1%甲酸溶液（3.2.6），B相为乙睛（3.1.6），梯度洗脱条件见

表1液相色谱梯度洗脱条件

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表1液相色谱梯度洗脱条件（续）

c）流速：0.35mL/min； d）柱温：40℃； e）进样量:2 μL。

5.3.2质谱参考条件

质谱参考条件如下： a 电离方式：电喷雾电离（ESI十）； b) 离子化电压：5500V； c）干燥气：N2；干燥气温度：550℃；气帘气压力：152kPa； 检测方式：多反应监测（MRM）； e) 喷雾气压力：氮气，压力379kPa；辅助加热气：氮气，压力448kPa； f 其他参考质谱参数见表2

表2其他参考质谱参数

相同试验条件下，试样中待测物质的 标准溶液中对应的保留时间 式样中被测组分定性离子的相对丰度与浓度接近的标准溶液中对应的定性离于 偏差不超过表3规定的范围，则可判定为试样中存在对应的待测物。

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性确证时相对离子丰度的最大充许偏差

除不加试样外，完全按照上述操作步骤进行。

式样中奥克巴胺含量按式（1）计算：

式中： X 试样中奥克巴胺含量《生态混凝土应用技术规程 CECS361：2013》，单位为微克每千克（ug/kg）； 试样测定液中被测物质量浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL）； V 一试样测定液定容体积，单位为毫升（mL）； m㎡ 一试样取样量，单位为克（g）； 1000换算系数。 以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，计算结果保留三位有效数字

在重复条件下获得的两次独立测定 的绝对差值不得超过算术平均

g时，奥克巴胺的检出限为3ug/kg,定

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附 录 A （资料性） 盐酸奥克巴胺标准品及内标的基本信息

表A.1盐酸奥克巴胺标准品及内标的基本信息

DB34／T 2734.1-2016 托卡马克聚变堆部件兼容性设计与评估技术指南 第1部分：设计BIS 202211

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本方法负责起草单位：北京市食品安全监控和风险评估中心（北京市食品检验所） 本方法参与验证单位：中国检验检疫科学研究院、河北省食品检验研究院、天津市食品安全检测技 术研究院、成都市食品检验研究院、广州质量监督检验研究院。 本方法主要起草人：张丽华、赵文霞、史海良、姜洁、毛婷、穆同娜、赵婷、贾婧怡、王羽、汤娱涵 王凯毅。