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T／CNCIA 03002-2020 涂料（漆膜）抗病毒性能测试方法.pdf简介：

T/CNCIA 03002-2020 是一项特定的标准或指南，关于涂料（漆膜）的抗病毒性能测试方法。然而，由于涉及到具体的行业专业术语，我无法提供详细的解读，因为这需要详细的行业知识和标准内容。通常，涂料的抗病毒性能测试可能涉及以下步骤：

1. 病毒暴露：将涂料样本涂覆在适当的基材上，形成漆膜，然后暴露于病毒（如新冠病毒）的环境中，模拟实际的使用和环境条件。

2. 病毒存活测试：在特定的时间内，检测涂膜上病毒的存活数量。这可能包括对涂膜进行生物检测，如PCR（聚合酶链反应）测试，以确定病毒的基因组是否还在。

3. 病毒抑制或杀灭效果：评估涂料的抗病毒能力，看其能否有效抑制或杀死病毒。

4. 重复性试验：为了确保结果的准确性，可能需要进行多次试验，以验证涂料的抗病毒性能的稳定性和一致性。

请注意，这只是一个大概的概述，实际的测试方法可能会根据病毒的类型、涂料的种类以及标准的具体要求有所不同。建议查阅T/CNCIA 03002-2020 的详细内容以获取准确的信息。

T／CNCIA 03002-2020 涂料（漆膜）抗病毒性能测试方法.pdf部分内容预览：

下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文 件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单)适用于 本文件。 GB/T 3186 色漆、清漆和色漆与清漆用原材料取样 GB/T6682一2008分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 9278 涂料试样状态调节和试验的温湿度 GB 19258 紫外线杀菌灯 GB 19489 实验室生物安全通用要求 YY0569 Ⅱ级生物安全柜

下列术语和定义适用于本文件， 3.1 病毒virus 没有细胞结构、只能在宿主细胞内进行复制的微生物或遗传单元，通常由蛋白质和一种类型的核 (DNA或RNA)组成。 3.2 抗病毒antiviral 通过物理或化学等措施，便样品表面感染病毒数量减少的状态。 3.3 抗病毒活性值antiviralactivity 经过抗病毒处理的样品与未经抗病毒处理的样品在接种病毒培养后病毒感染滴度的对数差值 3.4 抗病毒率antiviralrate 经过抗病毒处理的样品与未经抗病毒处理的样品在接种病毒培养后，病毒感染滴度相比较减少

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CJJ 128-2017：生活垃圾焚烧厂运行维护与安全技术标准（无水印 带书签）T/CNCIA03002—2020

白分率。 3.5 病毒的感染滴度infectivitytiterofvirus 单位体积的细胞溶解产物或溶液中具有感染性的病毒颗粒数目。 3.6 蚀斑plaque 由单个具有感染能力的病毒颗粒在半固体培养基下的单层细胞中形成的一个局限性区域。 3.7 蚀斑形成单位plaqueformingunits;PFU 表示单位体积中病毒浓度的单位。 3.8 蚀斑试验plaqueassay 通过梯度稀释法确定以PFU形式表示的病毒感染滴度的测试方法。 3.9 半数组织培养感染剂量50%tissuecultureinfectivedose，TCIDso 病毒洗脱液或病毒稀释液中引起50%细胞病变的可感染性病毒的浓度。 3.10 抗病毒耐久性 antivirusdurability 模拟产品使用过程的光照老化方式，经过一定时间的紫外光照射后的抗病毒性能

白分率。 3.5 病毒的感染滴度infectivitytiterofvirus 单位体积的细胞溶解产物或溶液中具有感染性的病毒颗粒数目。 3.6 蚀斑plaque 由单个具有感染能力的病毒颗粒在半固体培养基下的单层细胞中形成的一个局限性区域 3.7 蚀斑形成单位plaqueformingunits;PFU 表示单位体积中病毒浓度的单位。 3.8 蚀斑试验plaqueassay 通过梯度稀释法确定以PFU形式表示的病毒感染滴度的测试方法。 3.9 半数组织培养感染剂量50%tissuecultureinfectivedose，TCIDso 病毒洗脱液或病毒稀释液中引起50%细胞病变的可感染性病毒的浓度。 3.10 抗病毒耐久性 antivirusdurability 模拟产品使用过程的光照老化方式，经过一定时间的紫外光照射后的抗病毒性能

将病毒接种于制备好的样品上，经特定的接触时间后，通过比较试样和对照样中计数到的存活病毒 的值来计算病毒的减少率。有两种方法可以计算感染性病毒滴度：一是蚀斑试验（见8.5.1）；另一种是 TCIDs0方法（见8.5.2）。 注，病毒计算方法实验室可以根据自身的实验条件和实验技术选择

测试病毒见表1，也可以选择其他病毒进行试验，同时选择相应的病毒宿主细胞，并保证整个操作 过程满足实验室生物安全要求

不影响病毒毒力和稳定性，并且不吸水的材料（以聚乙烯、聚丙烯或聚酯如聚对苯二甲酸乙二醇酯 制成）。用70%乙醇溶液浸泡10min，再以无菌水冲洗，自然干燥后备用。 注：均质袋切下的膜也适用

下列配方制备试剂，也可按所操作的病毒及宿主的情况自行购买适用的等效商品化试剂。

应符合GB/T6682—2008规定的三级水

应符合GB/T6682一2008规定的三级水

5.3.3最低必需培养基(EMEM

配方见附录A。商用培养基若有任何成分缺失，可根据EMEM配方表添加，见附录A中表A

5.3.47.5%NaHCO.溶液

特75gNaHC3浴于8UUmL水中，定谷至 1000mL配成7.5%NaHCO3浴液。便用0.22 滤器对溶液进行过滤除菌。配制后如不立即使用，应置于2℃～8℃保存。保存期限不得走 个月。

将100mL37%的甲醛溶液加到900mL的水中制备甲醛溶液。配制后如不立即使用，应置于 20℃～25℃保存。保存期限不得超过1个月。 注：可使用其他经验证合格的细胞固定液

5.3.6亚甲基蓝溶液

取0.375g亚甲基蓝和62.5μL1mol/L 1000mL的水中制备亚甲基蓝溶液。 配制后如不立即使用，应置于20℃～25℃保存。保存期限不得超过1个月

5.3.7灭活的胎生血清（FBS）

把低温贮藏的胎牛血清于37℃水浴解冻溶解。然后，将水浴锅的水温升温至56℃后再维持 30min灭活，分装后置于一20℃冰箱里保存。使用前，于37℃水浴解冻

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5.3.10双倍浓度的维持培养基

5.3.11磷酸盐缓冲液（PBS)

将8.0gNaCl、0.2gKC1、2.9gNa2HPO·12H2O和0.2gKH,PO.溶于1000mL的水中制备 PBS，用压力蒸汽灭菌（见6.2）。配制后如不立即使用，应置于2℃～8℃保存。保存期限不得超过 1个月。

5.3.12从生胰腺分离的胰蛋白酶和PBS溶液

5.3.12.1将从牛胰腺分离到的1.0g胰蛋白酶溶解于100mLPBS中，并用震荡器震荡2h以充分混 匀。使用0.22um过滤器对溶液进行过滤除菌。如不立即使用，则分装后放在一80℃冰箱里保存。使 用前，于37℃水浴解冻。 5.3.12.2将1.0mL按5.3.11.1要求配制的溶液加至9.0mLPBS中混匀，分装并保存在低于一20℃ 的冰箱。使用前，于37℃水浴解冻

用于蚀斑试验的琼脂培养

溶液加人1000mL双倍浓度的维持培养 充分混匀。对流感病毒的蚀斑试验时，加3.0mL胰蛋白酶。使用前，把溶液放37℃水浴锅温浴。

将15g细胞培养琼脂溶于1000mL水中混匀，用高压蒸汽灭菌。使用前，将溶液放60℃水

5.3.15.3琼脂培养基的制备

5.3.16卵磷脂吐温大豆酪蛋白培养液（SCDLP肉汤培养基）

将17.0g酪蛋白陈、3.0g天豆蛋白藤、5.0gNaCL、2.5gNa2HPO4、2.5g葡萄糖和1.0g卵磷月 1000mL水中。搅拌均匀后加人7.0g非离子型表面活性剂吐温80，用NaOH溶液或HC1溶溶 I值调整至6.8～7.2(25℃），用高压蒸汽灭菌。配制后如不立即使用，应置于2℃～8℃保藏。 限不得超过1个月

34±1）℃和（37±1)℃，可维持5%的二氧化碳浓

可以满足温度（121土2）℃和压力（103土5）kPa下的操作。

于灭菌或干燥试验材料

能保持160℃～180℃的温度，温度波动不超过士2℃。控速范围500r/min~10000r/min， 确度1%。

符合YY0569要求的IⅡI级及以上生物安全相

合YY0569要求的Ⅱ级及以上生物安全柜

用于培养细胞的观察。

量程:10 μL~100 μL,100 μL~1 000 μL,1 ml

控温范围：25℃~55℃，温度准确度1℃

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空温范围20℃～50℃，温度准确度1℃。

20℃~50℃CCGF 312.2-2008 聚乙烯(PE)管材，温度准确

6.13其他微生物学试验耗材

用于试剂配制和微生物培养的培养皿 试管、锥形瓶等其他微生物学试验耗材

7.1从低温中复苏宿主细胞

不新的有通气帽盖的75cm组 胞瓶SY／T 7002-2020标准下载，加人20mL生长培养基，将融化的全部细胞转入细胞瓶中。将细胞瓶放进细胞CO2培养箱 37℃土1℃，5%CO，），培养（24土2)h，用显微镜观察细胞是否贴壁长满，若细胞长满后按照宿主细胞 传代培养的步骤开始连续传代.若没长满.继续培养

准备好长满的宿主细胞。将冷冻的病毒放人（37士1）℃水浴，使其迅速解冻，并将其转移倒一个新 的试管中，用维持培养基将其稀释到10"PFU/mL（或TCIDso/mL）～10*PFU/mL（或TCIDsc/mL）。 接种1mL稀释好的病毒液到细胞瓶中的细胞表面，使其覆盖均匀。将细胞瓶放人CO培养箱，培养 h使病毒吸附人细胞。补足适量维持培养基至细胞瓶，并将细胞瓶放人CO2培养箱培养1d～3d,增 病毒，其中流感病毒采用含0.15%牛胰腺提取胰蛋白酶的维持培养基，EV71采用维持培养基，培养 条件见表1。逐观察细胞病变，判断流感病毒的增殖情况。若细胞已发生3/4病变后，将含有病变细 饱及病毒的培养液放人离心管中，于（4士1）℃，1000g离心15min。离心后，取上清，即得到病毒液。按 适当体积将病毒液分装，置一80℃保存。通过蚀斑或TCIDso方法检测病毒滴度是否超过10°PFU/mL（或 TCIDso/mL），若滴度低于10°PFU/mL（或TCIDsa/mL），则从头开始重新制备。使用前，将冷冻的病毒 放人（37士1)℃水浴，使其迅速解冻。解冻后即为检测用的病毒悬液，若不立即使用，可暂存于2℃～ ℃冰箱，不得超12h。 注：实验室可以根据实验技术能力和经验，选择其他文献报道的有效的病毒繁殖方法